Подготовка к слету экологов по энтомологии

ФГОУ ВПО «Кубанский государственный аграрный университет»

ФАКУЛЬТЕТ ЗАЩИТЫ РАСТЕНИЙ

Кафедра фитопатологии, энтомологии и защиты растений                                                                      

М.И. Зазимко, А.М. Девяткин, А.И. Белый, Смоляная Н.М.

МЕТОДИЧЕСКИЕ

УКАЗАНИЯ

к учебной и производственно-технологической практике для студентов агрономических специальностей по сбору и хранению фитопатологических и энтомологических коллекций

   Агрономия – 110.200                                            профиль «Защита растений»

110200.62 – бакалавры                                              110.200.62 - бакалавры

    110.200.65 – специалисты

Краснодар 2011

Методические указания рассмотрены и утверждены учебно-методической комиссией факультетов защиты растений, агрохимии и почвоведения ( протокол № 6 от 28.03.11 г.)

Составители:

Зазимко М.И.,      д.с.-х.н., профессор, зав. кафедрой фитопатологии, энтомологии и защиты растений;

Девяткин А.М.      д.с.-х.н., профессор;

Белый А.И.            к.с.-х.н., доцент;

Смоляная Н.М.      к.б.н., доцент.

Учебным планом подготовки специалистов по защите растений на 2-5 курсах предусмотрены учебные и производственная практики в весенне-летний период.

Основная цель состоит в том, чтобы студент смог правильно и своевременно собрать гербарный и коллекционный материал, зафиксировать его таким образом, чтобы он мог продолжительно и качественно сохраняться для дальнейшего использования при проведении лабораторно-практических занятий.

Материал для написания отдельных разделов методического указания был взят из книги «Энтомологические и фитопатологические коллекции, их составление и хранение», 1980 (В.Б., Голуб, Д.А. Колесова, Ю.Б., Шуровенков, А.А. Эльчибаев)

© М.И. Зазимко, А.М. Девяткин, А.И. Белый, Смоляная Н.М.

© ФГОУ ВПО «Кубанский государственный аграрный университет», 2011

1.                 СБОР И ОФОРМЛЕНИЕ ЭНТОМОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА

Полевое снаряжение энтомолога

При сборе насекомых в полевых условиях исследователь всегда должен иметь при себе комплекс оборудования, основное из которых показано на рисунке 1..

Рисунок 1. Комплекс энтомологического оборудования

Ниже приводим краткое описание основных предметов полевого энтомологического снаряжения.

Сачок. Применяется для сбора насекомых (летающих, прыгающих, сидящих на травянистых растениях, кустарниках, деревьях, находящихся в воде), реже – пауков и клещей. Представляет собой мешок из различной материи, укреплённый на металлическом обруче, который прикреплен к деревянной палке (рис. 2).

Рисунок 2. Сачки: А – обычный; Б – с привязным мешочком

Для изготовления обруча берут упругую стальную проволоку толщиной 3-5 мм, длиной 112 см и сгибают её, как показано на рисунке 3.

Рисунок 3. Изготовление обруча энтомологического сачка:

А-В – заготовка обруча из отрезка проволоки; Г, Д – сгибание обруча

 Концы проволоки (7 см – с одной стороны и 11 см – с другой) сгибают под прямым углом. Это удобно делать с помощью молотка, положив проволоку на край наковальни, стальной балки, рельса и т. п. На концах проволоку загибают внутрь опять под прямым углом (небольшой участок – около 1 см). Загнутые сантиметровые участки расплющивают молотком и заостряют напильником. После этого проволоку сгибают в виде круга. Круг должен быть совершенно ровным, поэтому гнуть проволоку лучше всего на ровном круглом бревне или трубе, диаметр которых должен составлять около 36 см.

Очень удобны, особенно в экспедициях, складные сачки. Различные их конструкции показаны на рисунке 4.

Рисунок 4. Способы крепления сачка к полке (по Фасулати К.К., 1971): А – постоянное (жесткое) крепление; Б – крепление разборного сачка; В – обруч разборного сачка

Мешок для сачка шьют цилиндрической формы, на вершине округлый. На рисунке 5 дана выкройка для сачка.

Рисунок 5. Выкройка мешка энтомологического сачка

Если используется марля, то для прочности пришивают её тем же швом к бязевой полоске. Соединив, таким образом, марлю и бязь, сшивают сам мешок, что и показано на рисунке 6.

Рисунок 6. Прикрепление мешка воздушного сачка к обручу

(по Павлову С.А., 1947)

Чтобы прикрепить к палке обруч, необходимо вбить в неё загнутые и заострённые концы проволоки, а чтобы палка не треснула, целесообразно предварительно высверлить в ней небольшие отверстия, диаметром меньше проволоки, в которые потом необходимо вбить концы обруча. Место прикрепления обруча к палке необходимо обмотать прочной суровой ниткой, шпагатом или мягкой проволокой. При этом следует наматывать виток к витку как можно плотнее. Способы крепления палки к обручу возможны и другие.

Для сбора насекомых подойдет и подсак для ловли рыбы, однако вместо сетки, которой он комплектуется, необходимо использовать мешок из бязевой ткани.

Воздушный сачок используют для отлова многих насекомых, которые значительную часть времени проводят в воздухе. Насекомых (бабочек, стрекоз, ручейников, перепончатокрылых, многих мух, прямокрылых и им подобным) удобнее всего ловить воздушным сачком. При их обнаружении незаметно подходят и резким взмахом сачка подсекают. На лету сачок переворачивают на 180⁰, после чего насекомое оказывается на дне мешка и может быть легко извлечено из него. Бабочкам при этом следует прижать слегка грудной отдел, что травмирует их моторную мускулатуру, и они уже не могут летать.

Сачок изготавливают из мельничного газа (капроновой сетки) или из марли. Мешок в этом случае лучше пришить к полоске плотного холста или бязи шириною 10 см, которая служит для прикрепления мешка к обручу. Рама из тонкой стальной проволоки сечением не более 1,5 см прикрепляется к тонкой сухой прямой палке из легкого дерева или из бамбуковой трости.

Сачок для энтомологического кошения служит для сильного обмахивания травянистых и древесных (по тонким веткам) растений, на которых насекомые питаются или прячутся. Мешок для сачка изготавливается  из плотной материи (толстой капроновой сетки или бязи), насаживается на более толстую (до 3 мм)проволочную раму и крепится к крепкой орешниковой, березовой или бамбуковой палке (длина её на 20 см меньше роста сборщика). Сбор насекомых проводят следующим образом: сачок берут в одну руку так, чтобы конец палки доходил по крайней мере до локтя. Обруч сачка должен стоять перпендикулярно поверхности земли или дерева. Затем сачком быстро проводят по растению или ветвям дерева. Сачок по растениям нужно вести так, чтобы нижняя часть рамы ударяла по растениям, а верхняя проходила над ними. Нельзя вести сачок по самой поверхности почвы, так как в этом случае в него набираются комья земли и выборка насекомых становится невозможной; кроме того, значительная часть насекомых при этом травмируется.

При кошении по травянистой растительности исследователь не стоит на месте, а идет, делая удары сачком через один или два шага. Взмахом сачка один удар сачка по одну сторону. При этом лучше всего ударять сачком перед собой, несколько откидывая руку в сторону, но не поворачивая туловища. Закончив взмах, сачок поднимают в воздух, поворачивают кругом на 180⁰ и делают взмах в обратную сторону. При сборе насекомых с кустов и деревьев кошения ведут без переходов, захватывая с каждым взмахом новые зоны крон растений.

Сачок для сбора насекомых в кроне деревьев представляет собой обычный сачок для энтомологического кошения, только более крупных размеров: диаметр обруча – 50-70 см, длина палки – 3-5 м. Обруч целесообразно делать складным. Таким сачком можно собирать насекомых с листвы и ветвей, охватывая при этом сразу большую площадь кроны. П.А. Положенцевым (1979) рекомендуется к вершине конусовидного дна мешка сачка привязывать длинный шнур. Сачок такой конструкции надевается на ветку дерева, которая затем встряхивается обручем сачка.

Морилка в энтомологии служит для умерщвления собранных насекомых. Она представляет собой банку, лучше широкогорлую, цилиндрическую с хорошо пригнанной корковой пробкой, пропитанной парафином. В банку помещают ленточки фильтровальной бумаги для поглощения влаги, выделяемой насекомыми. Пробка должна быть плотно привязана к горлышку банки (рис. 7).

Рисунок 7. Морилки (А, Б) и пробки к ним (В, Г)

Вместо морилки возможно использование плотного целлофанового мешка с анестезирующим веществом.

В качестве анестезирующих веществ в морилке чаще всего применяют 10% раствор аммиака, хлороформ и серный эфир. Указанными веществами пропитывают вату и помещают в морилку на дно или укрепляют в пробке.

Ряд насекомых, например большинство дневных бабочек, лучше не помещать в морилку, а умерщвлять легким сдавливанием грудки, а крупных ночных бабочек – уколом в нервные центры, смачивая иглу раствором никотина.

Эксгаустер (всасыватель) применяется при выборке мелких насекомых из сачка, при сборе с растений, в подстилке и т. п. Эксгаустеры бывают различные и большинство из них можно легко изготовить в лаборатории.

Эксгаустер очень прост и представляет собой широкую пробирку диаметром 20-25 мм и длиной 85-110мм, плотно закрывающуюся корковой или резиновой пробкой (рис. 8).

Рисунок 8. Эксгаустеры

Эксгаустером пользуются следующим образом: резиновую трубку берут в рот, а конец стеклянной близко подносят к насекомому. При втягивании (всасывании) воздуха в себя воздушный ток подхватывает насекомое и уносит внутрь пробирки. Для эксгаустера необходимо иметь сменные пробирки, которые используются при проведении сборов в разных стациях во время одной экскурсии. Их носят в полевой сумке.

При сборе насекомых с небольших деревьев и кустарников эффективно встряхивание их на бязевую ткань или пленку 3х3 м или 4х4 м.

Ловчие деревья, ветви и пояса используют для вылова вредителей плодовых культур со скрытым образом жизни. Эти своеобразные приманки рассчитаны на то, чтобы короеды и усачи отложили на них яйца. Ловчие деревья выкладывают или в виде поваленных целых стволов, очищенных от ветвей, или в виде стоячих, но частично окоренных. Подробно различные приспособления описаны К.К. Фасулати (1971).

Ловчие пояса применяются для сбора насекомых, передвигающихся по стволам деревьев. Особенно эффективны они в плодовом саду для вылавливания гусениц плодожорки, некоторых видов тлей, клещей, многих паразитов насекомых. Для изготовления ловчих поясов используют мешковину, солому, гофрированную бумагу и др. Периодически смена ловчих колец позволяет получать данные о фенологии и динамике отдельных видов насекомых. Особенно эффективны ловчие пояса для сбора насекомых в период ухода на зимовку.

Пищевые ловушки. Насекомых привлекает запах бродящей патоки и различных сиропов. Насекомые при этом реагируя на запах падают в конус ловушки, оттуда в банку с фиксирующей жидкостью.

Ароматизированные различными веществами (бродящий раствор сахара, белковые приманки и др.) ловушки широко используют также для отлова очень многих видов мух и бабочек.

Пищевые приманки в последнее время часто применяются для повышения эффективности светоловушек.

Клейкие ловушки применяют для сбора мелких насекомых и клещей. Особенно широко применяются они при отлове мелких мух, перепончатокрылых, тлей, трипсов, белокрылок (в теплицах).

Принцип действия таких ловушек основан на прилипании насекомых и клещей к липкой поверхности. С этой целью улавливающую поверхность покрывают невысыхающим клеем.

В последнее время получили широкое распространение для отлова насекомых так называемые «желтые чашки Мерике», представляющие собой окрашенные в желтый цвет сосуды, заполненные водой. Принцып этого метода основан на способности многих видов насекомых (тлей, двукрылых, перепончатокрылых) лететь на желтый цвет.

Чашка для привлечения насекомых устанавливается на площадке, лишенной растительности, размером 20х20 м на краю исследуемого поля или среди растений, но в этом случае она укрепляется с помощью металлического держателя на коле с несколькими отверстиями. Кол с чашкой устанавливается в ряду, по мере роста растений держатель передвигается по колу выше, с расчетом, чтобы верхний край чашки был на уровне верхушек растений. Желтая чашка должна быть хорошо видна со всех сторон.

Светоловушки весьма эффективны при сборе насекомых и дают прекрасные результаты при изучении энтомофауны.

Различными источниками света привлекаются чешуекрылые, двукрылые, клопы, жуки, перепончатокрылые, сетчатокрылые, цикады, белокрылки, иногда – тли, сеноеды, поденки, веснянки, ручейники, уховертки, комары и др. Самый простой способ сбора: в теплые темные ночи (с момента потемнения до 1-2 сасов ночи) открывают окно лаборатории, включают сильный источник света, под который стелют лист белой бумаги. Опадающих на бумагу насекомых собирают руками, пинцетом или кисточкой в морилку или пробирки. Мелких насекомых удобно собирать эксгаустером.

Сбор насекомых часто происходит на свет с помощью светоловушек различной конструкции. Широкое распространение получила ловушка системы Л.Н. Сахарова (рис. 9) и её модимикации.

Рисунок 9. Светоловушка Сахарова (по Фасулати К.К., 1971)

Простейший прибор состоит из электрической лампы накаливания в 200-500 Вт и металлического абажура-рефлектора, к которому на расстоянии 20-25 см крепится конусообразная металлическая воронка, обращенная узким концом вниз.

Половые ловушки (секс-ловушки). Открытие половых аттрактантов у насекомых (или феромоноф), т.е. веществ, выделяемых самками или самцами для привлечения противоположного пола, в настоящее время широко используется в ловушках.

Большинство разработанных к настоящему времени половых ловушек имеют разные формы в виде крыши домика, стакан без дна из картона, конические под крышкой и др.

Для каждого вида насекомых, как правило, опытным путем устанавливается наиболее эффективная форма ловушки. На рисунке 10 показана наиболее уловистая форма ловушки для яблонной плодожорки с применением аналога феромона кодлемона.

Рисунок 10. Секс-ловушка для яблонной плодожорки фирмы «Зоекон» (США) (по Culver D.J., Barnes M.M.)

Во всех конструкциях половых ловушек для удержания привлеченных насекомых используется специальный невысыхающий клей. Его наносят вблизи источника феромона (рис. 11).

1	2
3	4
5	6

Рисунок 11. Типы половых ловушек для насекомых

1 – для отлова и стерилизации жуков щелкунов; 2 – для отлова самцов яблонной плодожорки; 3 – отлова самцов жуков желкунов; 4 – для отлова вишневой мухи; 5 – для отлова плодожорок; 6 – отлова жуков щелкунов.

Ловушка с лопастями успешно используется для отлова как жесткокрылых, так и чешуекрылых насекомых, а цилиндрические ловушкиприменяются преимущественно для отлова бабочек.

Методика сбора насекомых

Тли. Во время экскурсий тлей удобно собирать вместе с кормовым растением в большие пробирки (например, длиной 10-15 см и диаметром 3 см), помещая туда этикетки с указанием места и даты сбора, вида растения. В лаборатории сборы обрабатывают. Если материал нельзя разобрать немедленно, то его можно хранить несколько дней в холодильнике. При разборе материала тлей предварительно слегка замаривают, помещая в пробирку с тлями на несколько минут ватный тампон, смоченный в эфире или хлороформе. Тлей с растений снимают препаровальной иглой, кисточкой или пинцетом и вместе с этикеткой или номером помещают в небольшие пробирки, которые хранятся в емкостях с 70-75%-ным спиртом.

Кокциды. Методика сбора кокцид с последующим их препарированием и определением разработана Н.С. Борхсениусом (1973). Лучшим материалом для микроскопических препаратов из щитовок, подушечниц, ложнощитовок, хермесов, алейродид и некоторых мучнистых червецов служат молодие особи вскоре после их линьки на самку. Для этого червецов следует фиксировать в 70%-ном спирте, а щитовок засушивать вместе с растением. Что касается большинства мучнистых червецов и войлочников, от хорошие тотальные препараты можно получить и из самок, начавших яйцекладку. Из самок всех кокцид, закончивших яйцекладку, получить хороший микроскопический препарат значительно труднее.

Летающих самцов кокцид можно отлавливать ловушками различного типа. Собирают кокцид в течение всего вегетационного периода, но лучший срок обследования леса и сада – июнь, июль, в травянистой растительности – май, июнь, июль. Искать кокцид следует в щелях, трещинах коры, веток и ствола, в различных пятнах на листьях и плодах, в наростах поврежденных частей. Живут они и на корнях растений. Нахождению червецов, как и тлей, помогают муравьи.

Трипсы. При сборе с растений соцветия или колосья помещают в мешочки (20х30 см), сшитые из плотного легкого материала, или в бумажные пакетики, которые плотно завязывают. Растения слегка подсушивают, а затем вынимают, стряхивают над разостланным листом бумаги. Выпавших трипсов собирают кисточкой в пробирку со спиртом. Можно их вылавливать с растений сачком или эксгаустером.

Трипсы, живущие на листьях, учитываются путем простого погружения растений в 70%-ный спирт. После прополаскивания растения удаляются, а все трипсы остаются в спирте. Для подсчета их отфильтровывают.

Трипсы, вылетевшие из почвы, обычно собираются с помощью фотоэклекторов – небольших деревянных ящиков с пробиркой в боковой стенке.

Сбор и выведение паразитических перепончатокрылых

При подготовке данного материала использованы работы М.Н. Никольской и А.М. Герасимова (1937), И.А. Рубцова (1950), В.А. Тряпицина и др. (1965).

На цветущих растениях, куда многие насекомые слетаются для питания, паразитов можно вылавливать руками, пробиркой или сачком. Кошение сачком даёт массовые сборы. Косить следует на однородном растительном сообществе, выбирая из сачка накошенное перед тем, как перейти к кошению на других растениях.

Наиболее ценный материал получается путем выведения паразитов из различных стадий насекомого-хозяина. Поэтому при сборах внимательно осматривают и собирают всех подозрительных на заражение насекомых в различных стадиях их развития. Показателем зараженности яиц служит их почернение; зараженные личинки и гусеницы характеризуются вялостью или неподвижностью, причем на них иногда можно обнаружить прикрепленного снаружи паразита. Зараженные куколки несколько меняют свой цвет и внешний вид.

Что касается коконов различных насекомых, то все они без исключения должны браться для вывода паразитов, так как даже при заражении личинки или гусеницы вылет паразита происходит при уже после коконирования хозяина.

Собранный материал рассаживают в лаборатории по отдельным пробиркам, стаканам, садочкам в зависимости от количества; на этикетке, помимо обычных данных, помечается название и стадия хозяина, а затем отмечают срок вылета паразита. Если хозяин не определён, к паразиту прикладывают остатки его хозяина, по которым иногда возможно произвести определение.

Нередки случаи вторичного паразитизма многих перепончатокрылых. Факт этот устанавливается только детальными биологическими наблюдениями или вскрытием и анализом зараженного хозяина после вываривания их в 10%-ном растворе едкого калия (КОН). Количество линочных шкурок паразита, найденное под лупой или бинокуляром, послужит для определения степени паразитизма.

Для установления точных взаимоотношений паразита и хозяина необходимо индивидуальное выведение: каждая зараженная личинка, гусеница или куколка выводится в отдельном садке или пробирке. Массовый материал по паразитизму данной стадии данного хозяина выводят в общем садке. Если предполагают вывести мелкие виды паразитов, применяют специальные садки. Наиболее простая конструкция их – тип фотоэклектора: плотно закрывающийся ящик любых размеров, в зависимости от количества материала. На боковой стенке ящика просверлено одно или несколько отверстий, в которые вставляется пригнанная по отверстию пробирка или стеклянная банка; край отверстия пробирки или стеклянной банки должен быть на одном уровне с внутренней поверхностью ящика. Материал помещают в ящик, который ставится пробирками к свету. Выводящиеся паразиты летят на свет в пробирку, откуда их периодически выбирают, вынимая пробирки из ящика.

Этот способ может быть также применен для выведения перепончатокрылых, являющихся семяедами или галлообразователями. В таком случае в садок закладываются семена, листья или стебли растений со вздутиями или искривлениями, и выведение производят вышеописанным способом. Желательно, чтобы влажность воздуха в лаборатории не была ниже, чем в природе, иначе лучше держать ящик в инсектарии. Небольшие количества семян для выведения семяедов можно помещать в пробирки или банки, заткнутые ватой, которую, в случае надобности, можно регулярно смачивать.

Обработка материала для коллекций

Существует три основных способа хранения энтомологического материала: на ватных слоях (матрасиках), в смонтированном виде на энтомологических булавках и в консервирующих жидкостях. Кроме того, имеются особые способы хранения насекомых, например, в бумажных пакетиках (чешуекрылые), в надутом состоянии (гусеницы) и др. При подготовке к длительному хранению и составлению различных коллекций энтомологический материал соответствующим образом обрабатывается.

Разборка материала

Разборка представляет собой начальный этап обработки собранного в поле материала и подготовке его к длительному хранению. Важное условие, которое необходимо соблюдать при выполнении этой работы – дифференциация разных сборов, т.е. сборов с разных культур (или дикорастущих растений), из разных стаций, проводимых разными методами, в разное время суток и т.д.

Если насекомые доставлены в лабораторию живыми, их необходимо заморить или зафиксировать. Затем материал раскладывается на чистый, светлый (или контрастирующий по цвету с объектами) лист бумаги. Материал очищается от мусора, а необходимые сведения (где, когда, кем собран материал, стация, названия видов и т.д.) заносятся в первичную документацию. При необходимости материал дополнительно раскладывается по таксонам в отдельные кучки. Разборка материала проводится в основном с помощью глазного пинцета, а очень мелких объектов – с помощью мягкой (колонковой) кисточки. При захвате насекомого пинцетом необходимо оберегать его от повреждений, особенно вершину брюшка, так как расположенные здесь половые органы – гениталии – очень часто используются при определении вида.

Разборку материала и последующее раскладывание его на матрасики надо по возможности проводить в тот же день, когда он собран. Сохранение неразобранного материала на открытом воздухе в течение суток приводит к тому, что насекомые становятся сухими и ломкими, а при продолжительном хранении в морилках они к тому же могут покрыться плесенью.

Укладывание насекомых на ватные слои (матрасики)

На ватных слоях, или матрасиках, насекомые хранятся или до окончательной их монтировки на энтомологические булавки, или постоянно, в зависимости от целей коллекции и характера материала.

Ватный матрасик представляет собой бумажный конверт с вложенным в него ровным слоем ваты (рис. 12).

Рисунок 12. Ватный матрасик с насекомыми

Конверт изготавливается из плотной и достаточно жесткой бумаги, лучше всего – из оберточной или пергаментной, можно из кальки. Конверты должны быть слегка (на 2-3 мм) короче и уже коробки, в которой они будут храниться. Коробки из матрасиков изготавливаются из тонких дощечек (не толще 7 мм), фанеры или картона с плотно закрывающейся крышкой. Наиболее удобные размеры коробки для хранения матрасиков – 250х150х100 мм. При отсутствии специальных коробок можно использовать имеющиеся под рукой любые другие, но надо следить, чтобы крышка закрывалась достаточно плотно. Металлические коробки для хранения матрасиков непригодны, так как в них появляется плесень.

Ватные слои изготавливаются из свернутой в рулон ваты. Серая комковатая, так называемая техническая, вата почти не пригодна. Толщина ватных слоев должна быть 5-10 мм. Если ватный слой будет толще 5 мм, то крупные насекомые будут слишком возвышаться на нем, у них могут обламаться ноги и усики. Слишком толстые матрасики не выгодны, так как их поместиться в коробке очень мало. На ватный слой, вложенный в конверт, кладется листок тонкой, светлой бумаги. На этом листке будет написана этикетка. Желательно, чтобы ватный слой и этикетка были слегка меньше конверта, иначе при закрывании конверта они будут изгибаться, а лежащие на вате насекомые – сдвигаться со своего места. Под слой ваты можно подложить лист плотной бумаги, в этом случае ватный слой можно извлекать из конверта.

Укладка насекомых на матрасики должна быть системной. Насекомые раскладываются в том порядке, который соответствует характеру исследований: в систематическом, по стациям, кормовым растениям, методам сборы и т.д.

Разобранных насекомых помещают на ватном слое кучками или рядами. При проведении фаунистических сборов рекомендуется насекомых разных систематических групп (например, отрядов) раскладывать на разных матрасиках. Это значительно облегчает в дальнейшем разбор и монтировку материала и его определение (особенно если материал будет передаваться на определение специалистам по отдельным группам). Насекомых размещают на матрасике, как правило, в один слой, близко друг к другу, но так, чтобы они не соприкасались. Допускается укладывание или высыпание друг на друга лишь насекомых, имеющих твердые покровы, слабо выступающие и прижатые к телу усики и ноги (например, цикадовых). Насекомых очень часто кладут брюшком вниз. Дневных бабочек и других крупных насекомых, имеющих большие не складывающиеся крылья, укладывают на бок таким образом, чтобы крылья были сложены верхними сторонами друг к другу. В таком положении насекомые занимают меньше места и крылья у них меньше повреждаются.

Мелких перепончатокрылых можно укладывать на брюшко или на бок. Крупных насекомых желательно слегка придавливать к вате, что бы они лучше держались на месте.

Чешуекрылых помещают на матрасики лишь в том случае, если сбор проводится в больших масштабах и нет возможности их сразу накалывать и расправлять. Дневных бабочек лучше хранить не на ватных слоях, а в бумажных пакетиках (рис. 13).

Рисунок 13. Хранение дневных чешуекрылых

(по Козлову М.А., Нинбергу Е.М., 1971): А – умерщвление бабочки сдавливанием груди; Б, В – изготовление пакетика и укладывание в него бабочки

Насекомых, которые в дальнейшем будут монтироваться на энтомологические булавки (особенно для демонстрационных коллекций), рекомендуется предварительно расправлять ещё на вате. При этом крылья и длинные усики расправляются вдоль тела, передние ноги – вперёд, задние – назад. Насекомых, имеющих легко обламывающиеся длинные ноги, лучше укладывать с подогнутыми ногами. Для предотвращения исчезновения яркой окраски брюшка некоторых насекомых их предварительно обрабатывают ацетоном.

У некоторых крупных насекомых (таких как саранчевые, кузнечики, медведки) толстое, мясистое брюшко при хранении на ватных слоях очень быстро загнивает, и материал может оказаться непригодным для последующего изучения. Таких насекомых предварительно препарируют.

Различные сборы на матрасике разделяются пунктирной линией, проведенной или шариковой авторучкой или очень мягким простым карандашом, или химическим карандашом. Сборы можно разделять также черной ниткой или хорошо заметным пустым промежутком.

На листе бумаги, которым закрывают заполненный материалом ватный слой, пишется этикетка или несколько этикеток (если на одном матрасике помещается материал нескольких сборов). Этикетки отделяют друг от друга линией, проведенной карандашом или шариковой авторучкой, но не чернилами. Линии, разграничивающие этикетки, должны соответствовать разделительным линиям или интервалам на вате. В каждой этикетке указывается географический пункт сбора, стация, сельскохозяйственная культура или кормовое растение, другие сведения экологического характера, дата и сборщик. При необходимости в этикетке приводятся дополнительные сведения – время суток, метеоусловия, метод сбора, номер пробы и т.д. На этикетке полезно также сделать запись результатов предварительного анализа материала – общее число собранных особей.

Коробки с материалом на вате следует хранить в сухом месте в плотно закрывающемся ящике, в шкафу или в защищенном от прямого солнечного света месте. Дно ящика, в котором хранятся коробки с матрасиками, надо густо пересыпать нафталином. Хранение матрасиков открыто, без коробок, совершенно недопустимо, так как через некоторое время в матрасиках появятся вредители, материал будет непоправимо испорчен.

Монтирование насекомых на энтомологические булавки

Наиболее часто применяемый способ хранения насекомых в коллекции во взрослой фазе – в смонтированном виде на энтомологических булавках. В таком виде их обычно и изучают. Само монтирование на булавки осуществляется несколькими способами. Перед монтированием материал, хранящийся на ватных слоях, должен быть размочен; в тех случаях, когда требуется срочная постановка необходимого материала, включающего в основном мелких насекомых, обходятся без размачивания.

Размачивание материала. Размачивание насекомых, хранившихся на матрасиках, проводится во влажной камере. Камера представляет собой эксикатор с плотно закрывающейся крышкой, вместо которого можно использовать широкий стеклянный цилиндр, закрывающийся сверху стеклом. В крайнем случае можно воспользоваться простой тарелкой или миской, накрытой стеклянным колпаком (рис. 14).

Рисунок 14. Влажные камеры для размачивания насекомых

(по Фасулати К.К., 1971)

Рекомендации по размочке материала заключаются в следующем: чем насекомые крупнее, тем длительнее должна быть размочка; чем выше температура окружающей среды, тем короче время размочки.

В наибольшей степени на длительность размочки влияют размеры насекомых и твердость их покровов. Пределы времени размочки – от 1—15 часов до нескольких суток. Обычно насекомых мелких и средних размеров размачивают 1-2 суток.

Накалывание на энтомологичекие булавки. Накалывание  - самый распространенный способ монтировки на энтомологические булавки взрослых насекомых средних и крупных размеров (рис. 15).

Рисунок 15. Способы накалывания насекомых: А – мелких; Б – крупных

Все энтомологические булавки (не считая минуций – особых очень тонких, маленьких булавок без головок) имеют примерно одинаковую длину -30-40 мм, но толщина их различна. В зависимости от толщины они обозначаются номерами: 000, 00, 0, 1, 2, 3, 4, 5. Чем тоще булавка, тем больше её номер.

Насекомых накалывают в строго определенных местах (рис. 16).

Рисунок 16. Накалывание насекомых различных систематических групп: А, Ж – прямокрылых; Б – клопов; В – мух; Г – стрекоз; Д – перепончатокрылых; Е – жуков; З – бабочек. Точкой указано место, в которое должна входить булавка при накалывании

Удобно также накалывать мелких насекомых на светлую бумагу. Наклеивание на картонные пластинки мелких насекомых (таких, как цикадовые, листоблошки, клопы, жуки, многие перепончатокрылые, двукрылые) очень часто наклеивают на кусочки из плотной белой бумаги или тонкого картона, нарезанного в виде прямоугольников размерами, как правило 4-5х12 мм или треугольников – 3х7 мм (рис. 17).

Рисунок 17. Картонные пластинки различных размеров и формы для наклеивания мелких насекомых (увеличено)

Для наклеивания насекомых обычно применяют специальный энтомологический клей, получаемый растворением в грушевой эссенции (амилацетате) мелко нарезанного целлулоида. До полного растворения и образования густой гомогенной массы целлулоид выдерживают в эссенции 2-3 суток. Вместо грушевой эссенции и целлулоида можно использовать ацетон и оргстекло. Применяют также растворимый в воде синтетический клей для склеивания бумаги и растворенный в воде вишневый клей.

Экземпляр насекомого при наклеивании не должен утопать в клею. Почти вся поверхность насекомого должна оставаться чистой, иначе невозможно будет его определить. Особенно важно следить за тем, чтобы были свободны от клея усики, а также вершина брюшка. При необходимости усики и ноги расправляют.

Площадки с наклеенными насекомыми накалывают на булавки. Часто на одну булавку накалывают по несколько картонных площадок (2-5) с наклеенными на них насекомыми одного и того же вида.

Сохранение материала в консервирующих жидкостях.

Личинок многих насекомых (клопов, жуков, чешуекрылых, двукрылых и др.), яйца и куколки насекомых, взрослых мелких насекомых, имеющих нежные покровы (первичнобескрылых, трипсов, мелких паразитических перепончатокрылых, некоторых двукрылых и др.), а также клещей хранят в консервирующих жидкостях.

В качестве консервирующих жидкостей чаще всего применяют 70-80% спирт или 4-5% формалин; в крайнем случае 3% раствор карболовой кислоты или 5% - салициловой кислоты. Применяются также специальные растворы консервирующих жидкостей (главным образом для гусениц бабочек и личинок жуков), позволяющие лучше сохранить их естественную окраску, волоски и щетинки на теле и предохранить от побурения и почернения.

Взрослых насекомых сразу помещают в консервирующую жидкость (усыпленных в эфире или живых). Личинок чаще предварительно фиксируют кипятком или в специальных смесях, что предохраняет их от сморщивания и изменения окраски при длительном хранении.

Существует несколько способов хранения насекомых в консервирующих жидкостях. Один из наиболее удобных и часто применяемых – хранение в маленьких пробирках, помещенных в банку с консервирующей жидкостью.

Пробирки с материалом, закупоренные ватными пробочками, опускаются пинцетом в банку или склянку со спиртом или другой консервирующей жидкостью (рис. 18).

Рисунок 18. Хранение пробирок с энтомологическим материалом в стеклянной банке с притертой пробкой

Склянка должна быть с достаточно широким горлышком, чтобы из неё без труда можно было извлечь пинцетом пробирки. Лучше всего использовать банки с притертыми пробками объемом 0,5-1 л. Вместо стеклянных банок для хранения заспиртованного материала можно применять пластмассовые с плотно прилегающей прокладкой под крышкой.

Другой способ хранения насекомых в консервирующих жидкостях – непосредственно в банках, без заключения их в пробирки. При этом необходимо, чтобы консервирующая жидкость полностью покрывала насекомых. В банку кладется этикетка, общая для всех насекомых. Затем банку закрывают пробкой, которую, если насекомые не подлежат в ближайшее время обработке , заливают парафинои или (притертую пробку) смазывают вазелином. Также можно хранить материал и в крупных пробирках или пузырьках с хорошо пригнанными и пропарафиненными пробками без помещения их в общую банку. Пробирки и пузырьки следует хранить в вертикальном положении. Однако в большинстве случаев лучше все-таки сохранять насекомых в маленьких пробирках, погруженных в консервирующую жидкость.

При любом способе хранения на банку или на пузырек приклеивают этикетку, в которой приведены основные сведения о хранящемся материале.

Особенности консервации различных насекомых.

Тли хранятся в маленьких пробирках (куда вкладываются этикетки) в емкостях с 70-80% спиртом. В таком виде их можно пересылать специалисту для определения.

Очень полезно перед помещением тлей в спирт выдержать их предварительно в смеси четыреххлористого углерода с 96-99%-ным спиртом (в соотношении 1:1), налитой в небольшие стеклянные бюксы с притертыми пробками. Материал в этой смеси выдерживают от 10 минут до 3 часов, в зависимости от степени опыления и интенсивности окраски вида.

Щитовок и ложнощитовок, имеющих твердую спинную поверхность тела, желательно хранить на коре, листьях или веточках в сухом виде. Щитовок складывают вместе с кусочками растений в конверты на вату. Червецов хранить в конвертах нельзя, так как они легко опадают с растения и могут быть повреждены.

Все сухие сборы следует просушивать (листья, веточки и кора растений должны хорошо просохнуть), лишь после этого образцы можно заворачивать или закрывать коробки крышкой, иначе они покрываются плесенью, мицелий грибов прорастает через тело кокцид, и последние становятся непригодными для определения.

Личинки клопов, имеющие мягкие покровы (слепняки, лигеиды, многие щитники и др.), при высыхании, как правило, сильно деформируются. Поэтому их следует хранить в 7—80%-ном спирте или в 4-5%-ном формалине, а личинок с твердыми покровами (кружевницы, личинки старших возрастов черепашек и др.) – в сухом виде, наклеенными на картонные прямоугольники.

Личинки жуков хранятся в консервирующих жидкостях, куда их помещают живыми или усыпленными в эфире, но лучше после предварительной фиксации. Крупных личинок жуков фиксировать надо обязательно. Собранных личинок хищных жуков, пластинчатоусых и других крупных личинок до фиксации кладут в баночки или пробирки (в зависимости от величины личинок) с почвой или холодной водой. Последний способ имеет то преимущество, что в воде личинки, долго оставаясь живыми, не повреждают друг друга. В почве же, в тесноте, они нередко наносят друг другу раны челюстями.

Предварительная фиксация личинок жуков, особенно крупных (таких как личинки пластинчатоусых), позволяет сохранить их светлую и даже белую окраску. И определить их во многих случаях будет невозможно.

Существует несколько способов фиксации. Самый простой из них и наиболее подходящий для крупных личинок – обработка кипятком. Для этого берут какую либо посуду (химическую пробирку, или стакан, металлическую банку, фарфоровый тигель и т.п.), в которую наливают воду и опускают личинок. Затем воду нагревают до кипения. После того, как вода закипела, посуду снимают с огня, дают воде успокоиться, а потом снова доводят до кипения, и так повторяют 2-4 раза. Если покровы личинок достаточно плотные, то, наоборот, личинок только обливают кипящей водой, но не кипятят. Затем дают воде остыть, вынимают из посуды личинок, кладут их на лист фильтровальной бумаги, чтобы ушла излишняя вода, после чего консервируют в 70%-ном спирте. Приблизительно через неделю спирт в банке с личинками следует заменить свежим 70%-ным спиртом, так как свежие личинки выделяют воду, и крепость спирта снижается.

При фиксации на теле крупных мягких личинок рекомендуется сделать несколько наколов иглой, что ускорит пропитку тканей фиксирующей жидкостью.

Хранить фиксированный материал необходимо в темном шкафу, так как свет обесцвечивает и размягчает фиксированных в спирте личинок.

В качестве консервирующей жидкости для личинок жуков чаще всего применяется 70-80%-ный спирт.

Можно также хранить личинок в глицерине или в глицерин-желатине, куда их переносят из кипятка, но покровы при этом дубеют.

Гусеницы чешуекрылых. Живых гусениц обычно фиксируют кипящей водой, причем если гусеницы небольшие (до 3 мм), от их достаточно опустить в кипяток и оставить там на короткий срок (менее 1 минуты) без кипячения. В крайнем случае гусениц можно не препарировать, а только ошпаривать кипятком.

Крупных гусениц следует выдерживать 1-2 минуты в горячей воде, осторожно доводя её до кипения. Кипячение гусениц производят в химической пробирке, которую надо постоянно слегка встряхивать; для очень крупных гусениц используют химические стаканы. После окончания кипячения содержимое пробирки или стакана выливают на часовое стекло или в чашку Петри, а затем пинцетом осторожно гусеницу вынимают и переносят на часовое стекло в воду. Оттуда гусеницы переносятся в 70-80%-ный спирт. За неимением спирта гусениц можно сохранить в 4%-ном формалине или денатурате.

Помещать фиксированных гусениц удобнее всего и целесообразнее в пробирки сообразно их количеству и величине, по одному виду (или номеру) в каждую пробирку, закладывая их сверху комочком ваты, во избежание перемещения в пробирке. Гусениц часто хранят в надутом состоянии. Этот способ применяется в основном для демонстрационных целей.

Перепончатокрылые. Мелких (менее 3 мм) паразитических перепончатокрылых фиксируют в 70-75%-ном спирте, что позволяет хорошо сохранить у них общую форму тела, в особенности форму члеников усиков (но иногда раздувается брюшко). Насекомых помещают в спирт живыми или заморенными в эфире.

Двукрылые. Личинок мух следует фиксировать кипятком или в хромовой смеси. После фиксации личинок хранят в 70-80%-ном спирте или 2-5%-ном формалине в маленьких пробирках или пузырьках. Часто обходятся без предварительной фиксации: материал после умерщвления сразу закладывают в спирт или формалин, где и хранят. Взрослых галлиц хранят также в спирте. Двукрылых, имеющих длинные, легко обламывающиеся конечности (комары-долгоножки) следует хранить на ватных слоях.

Яйца и куколки насекомых обычно хранятся в 70-80%-ном спирте. Куколок хранят часто также сухими после предварительной фиксации в кипятке или над паром.

2. СБОР И ОФОРМЛЕНИЕ ГЕРБАРНОГО МАТЕРИАЛА ПОРАЖЕННЫХ РАСТЕНИЙ

     Гербарий сдается в количестве 30 видов по 50 экземпляров каждого.

Для гербария следует брать пораженные растения или  их отдельные органы, с хорошо выраженными признаками болезней в виде налетов, пустул, пятнистостей, деформаций и т.д.

   Образцы с грибными заболеваниями отбирают и гербаризируют при сформировавшемся обильном спороношении.

     Образцы для гербария собирают на протяжении всего вегетационного периода в поле, саду, огороде, теплицах и других местах. Их помещают в ботаническую папку или сетку и отделяют друг от друга фильтровальной или газетной бумагой, нарезанной по величине гербарной сетки. Можно помещать несколько небольших экземпляров (например, листьев) на один лист бумаги. Если листья увяли, помялись их необходимо тщательно распрямить.

     Для ускорения просушки сочных листьев с толстыми жилками, их препарируют: жилки и черешки немного срезают, уменьшая их толщину.

     Сушится растительный материал на солнце или в сухом помещении. В этом случае прессы с заложенными в них растениями не следует полностью заполнять. Это обеспечивает свободную циркуляцию воздуха вокруг просушиваемого материала. Сушить можно и неподалеку от источников умеренного равномерно поступающего тепла при температуре 34-35⁰С. Слишком сильный первоначальный перегрев может вызвать «запаривание» образцов, особенно когда редко меняется прокладочная бумага. При этом регулярно проверяется натяжение шпагата и сетка поворачивается обеими сторонами к источнику тепла. Ослабление натяжения шпагата приводит к искривлению или съеживанию материала.

     В первые трое суток сушки гербарные образцы следует два раза в день перекладывать на сухие листы бумаги до полного высыхания. Использованную влажную бумагу можно высушить на солнце и снова использовать для гербаризации. После каждой перекладки гербарные образцы вместе с бумагой помещают между двумя сетками и стягивают шпагатом. Затем их подвешивают на солнце для сушки. Некоторый материал можно ставить под пресс.

     Готовность материала определяется по следующим признакам: целое травянистое растение взятое за один конец сохраняет горизонтальное положение и не свисает книзу или при приложении к щепке не дает ощущения холода.  Хорошо высушенный растительный материал с этикеткой готов к сдаче или пересылке.

     Если материал берется в поле, саду и других местах и не сразу закладывается в гербарные сетки его необходимо завернуть в газетную бумагу и поместить в целлофановый кулек.

Высушенных образцы помещают между двумя листами газетной или плотной бумаги или в конверты из такой же бумаги размером 20-21Х23-29 см. Каждый гербарный образец (50 экземпляров) сопровождается этикеткой, на которой указывается болезнь, возбудитель заболевания, пораженная культура, дата и место сбора материала, фамилия студента.

Название заболевания___________________________ Возбудитель___________________________________ Пораженная культура___________________________ Дата сбора__________ Место сбора_______________ ______________________________________________ Собрал________________________________________

     Пораженные болезнями плоды, клубни, корнеплоды и другие сочные образцы фиксируют в закрытых стеклянных банках в консервирующих жидкостях. Ими могут служить спирт (70%-ный), смесь спирта с формалином, растворы поваренной соли (8-9%-ный) или медного купороса (1%-ный).

     Для более длительного хранения используют консервант из формальдегида (40%-ный) – 25 мл, спирта (96%-ного) – 150 мл и воды – 1 л. Для сохранения зеленой окраски образцов их помещают в раствор, состоящий из 1 части ледяной уксусной кислоты, насыщенной кристаллическим ацетатом меди и 4-х частей воды. Объекты кипятят 1-2 мин. до тех пор, пока не вернется зеленый цвет, и затем хранят в 5%-ной растворе формалина.

     В отдельных случаях образцы фиксируются в консервирующих жидкостях (спирт 70%, формалин, смесь спирта с формалином, раствор поваренной соли и раствор медного купороса).

      Эти смеси для фиксации и хранения растительного материала в большинстве своем токсичны, в меньшей степени опасна для здоровья человека копенгагенская смесь, содержащая смесь этилового спирта с добавлением метилового спирта, глицерина и воды в соотношении 26:1:10. Глицерин позволяет сохранить гибкость материала (Бридсон, Форман, 1995).

      Концентрированный раствор поваренной соли приготовляется путем растворения 10 частей соли на 100 частей воды. Первоначально для консервации материала объект кипятят в 1% растворе медного купороса 1-2 минуты, чтобы он сохранял зеленую окраску. После этого помещают в банки в один из вышеперечисленных  консервирующих растворов, которые плотно закрываются притертой пробкой или заливаются парафином.

     На каждую банку наклеивают соответствующую этикетку.

     Большинство пероноспоровых (ложно-мучнисторосяных грибов) развиваются с весны, кроме фитофтороза картофеля, заражающего растения во второй половине вегетации. Пораженные листья и стебли различных растений гербаризируются с наиболее характерными признаками поражения, т.е. с пятнами и налетами и т.д. Гниющие части растения (стебли всходов свеклы, клубни картофеля) фиксируются. Необходимо в летний период собрать листья, на которых пораженные участки стали бурыми, а конидиальный налет исчез, т.к. в этот период сформировалась половая стадия ложно-мучнисторосяных грибов – ооспоры. Исключение составляет возбудитель фитофтороза картофеля и томатов, в цикле развития которого в России ооспоры не образуются. Для сохранения спороношения пораженные фитофторой листья собирать и гербаризировать в утренние часы.

     При гербаризации сочных листьев с крупными жилками и черешками, например, капусты, табака, подсолнечника, их необходимо срезать скальпелем, бритвой или отточенным ножом.

     Образцы растений капусты, табака, томатов, пораженных черной ножкой, свеклы – корнеедом, отбираются на всходах и вполне сформировавшейся рассаде. Гербаризируются целые растения.

     Картофель или томаты, пораженные увяданием, фиксируются в формалине, причем берутся нижние части стеблей, черешки листьев с темными штрихами или полосками и клубни, на разрезе которых видно темное кольцо сосудистых пучков.

     Фиксируются так же клубни с раковыми опухолями, черной ножкой, обыкновенной, порошистой и черной паршой, фитофторой, сухой и мокрой гнилями, корнеплоды свеклы с наростами.

     Пораженные черной ножкой, черной паршой, увяданием ростки и стебли можно также гербаризировать.

     На молодых растениях томата до цветения и во время цветения гербаризируют листья, пораженные бурой пятнистостью, мозаикой, столбурные растения. В период созревания плодов собирают листья с белой пятнистостью и альтернариозом, стебли с признаками бактериального рака и штриховатости. Болезни плодов фиксируют.

     На рассаде и семенниках капусты собирают листья с ложной мучнистой росой и фомозом, на взрослых семенных растениях – с бактериозами. Черешки и жилками при этом срезают. Стручки, пораженные черной плесенью, гербаризируют в период уборки. Корни, пораженные килой, собирают летом до их загнивания и сразу фиксируют.

     Пораженные бактериозом растения гербаризируют и фиксируют.

     Бактериоз огурца следует собирать в начальной стадии развития болезни при хорошо выраженных маслянистых пятнах (в июле-августе месяце, при образовании бурых пятен и дырчатости). Пораженные бактериальной рябухой листья табака гербаризируются в июле-августе.

     Пораженные антракнозом или бактериозом плоды огурца фиксируют целиком или срезают с пораженных плодов кожицу и фиксируют. Растения огурца, пораженные корневой гнилью или белой гнилью, гербаризируют целыми, а загнившие плоды или часть стебля с белой гнилью фиксируют.

     На севке, репке, семенниках лука собирают и гербаризируют листья, стрелки и соцветия, пораженные ложной мучнистой росой, черной плесенью, вирусными болезнями. С ложной мучнистой росой следует отбирать образцы, на которых  хорошо выражена хлоротичность и обильный налет спороношения гриба. Сушить надо быстро, лучше всего горячим утюгом через бумагу для сохранения типичной окраски. Листья и стрелки можно разрезать с одной стороны, а затем гербаризировать. Вскоре после высадки семенников лука собирают и гербаризируют пораженные желтой карликовостью растения.

     Весной гербаризируются образцы фасоли с эцидиальной стадией ржавчины, пораженные мозаикой, а также молочай, пораженный эцидиальной стадией ржавчины гороха.

     В период созревания бобов гербаризируются листья, стебли гороха, пораженные аскохитозом, ржавчиной, листья фасоли, пораженные бактериозом, мозаикой и ржавчиной.

     Бобы гороха, пораженные аскохитозом, и бобы фасоли, пораженные бактериозом и антракнозом собираются и фиксируются при уборке урожая.

     Пораженные антракнозом побеги, цветоносы и черешки листьев клевера следует собирать на растениях  2-го и особенно 3-го года и гербаризировать. Ржавчина и различные пятнистости собираются также в конце вегетации, когда спороношение зрелое.

     Гербаризация мозаичных листьев, пораженных вирусными болезнями, проводится методом быстрой сушки, лучше всего горячим утюгом через бумагу. В таком случае сохраняется характерная мозаичная окраска. Гербаризировать следует молодые листья картофеля, томатов, табака. Образцы со скручиванием и полосчатой пятнистостью картофеля фиксируют в фиксирующем растворе целыми побегами.

     Пораженные мозаикой листья собираются в начальной и конечной стадии развития – с резко выраженной мозаичностью и с признаками отмирания ткани.

     Мозаичные плоды огурца или томата фиксируют в 4%-ном горячем растворе медного купороса, который закрепляют светло- и темно-зеленую окраску тканей. Деформированные растения и с некрозами засушиваются обычным способом. Образцы вирусных болезней собирают в июне – июле – августе.

     Ранней весной собираются перезимовавшие пораженные мучнисто-росяными грибами листья и стебли злаков, побеги и ягоды крыжовника, побеги яблони и сушатся.

     На зерновых образцы с мучнистой росой собираются в два срока: в период цветения или молочной спелости (конидиальная стадия) и в период созревания зерна (сумчатая стадия).

     В летний период гербаризируются многие растения с белой грибницей и конидиальной стадией. На некоторых растениях сумчатая стадия созревает в конце вегетации и собирать их нужно в это время. Эта стадия легко обнаруживается по наличию многочисленных, почти черных точек плодовых тел на мицелии гриба.

     Головневые заболевания очень хорошо распространены на зерновых культурах. Многие виды головни гербаризируются во время цветения злаков. Материал надо собирать по видам пыльной и стеблевой головни. Колоски, пораженные твердой головни злаков, отбираются в период их созревания. Их можно связывать пучками по 10-15 штук и сушить в подвешенном состоянии.

     Пузырчатую головню кукурузы лучше собирать в течение всей вегетации растений и гербаризировать все пораженные органы: стебли, листья, початки и метелки. Образцы по головне лука отбираются при листовой форме в весенний период, а при поражении луковиц – осенью при уборки.

     Сборы ржавчинных грибов проводятся в течение всей вегетации. Весной гербаризируются листья различных растений (барбарис, молочай, крушина слабительная, малина, роза и др.), пораженные эцидиальной стадией ржавчины. В летний период собирается материал с уредостадией – на листьях, стеблях злаковых и других культур. В конце вегетации гербаризируются стебли и листья с телео-стадией.

     В фазу молочной и восковой спелости проводится сбор растений, пораженных гельминтоспориозом, бактериозом и септориозом.

     Незадолго до уборки собираются колосья, пораженные фузариозом («пьяный хлеб») и созревшие рожки спорыньи.

     Сбор болезней подсолнечника следует проводить в период его созревания. Пораженные гнилями корзинки и стебли с характерными бурыми концентрическими  и коричневыми  и черными пятнами белой, пепельной гнилей, фомопсиса и эмбилизии сушатся без пресса.     Начиная с фазы цветения подсолнечника собирают уредо- и телейтостадию ржавчины. Эцидиальная стадия формируется на всходах посевов подсолнечника или на падалице. На таких растениях хорошо проявляется и милдью подсолнечника.

     Цветковые полупаразиты и паразиты следует собирать вместе с питающими растениями.

     Образцы заразихи отбираются во время цветения целыми растениями с частью корней подсолнечника или табака. Собирать следует и ее цветоносы со зрелыми коробочками.

     Повилики собирается в период образования цветков и семян. Гербаризируются все распространенные виды повилики – льняная, обыкновенная, полевая, европейская, тонкостебельная.

     Растения омелы с плодовых или древесных культур срезаются вместе с веткой пораженного растения поздней осенью, когда ее ягоды созреют.

     На яблоне и груше парша и черный рак проявляются на листьях, плодах и ветвях. Весной необходимо собрать одногодичные ветви с признаками парши и ветви можжевельника с телейтостадией ржавчины яблони и груши.

     В период цветения семечковых и косточковых плодовых деревьев срезаются и высушиваются увядшие цветоносные побеги с цветками и листьями, пораженные монилиальным и бактериальным ожогом и мучнистой росой.

     Летом собирают листья яблони, пораженные паршой, черным раком, мучнистой росой и ржавчиной; груши – с белой пятнистостью; косточковых – клястероспориозом (дырчатой пятнистостью), коккомикозом, ржавчиной, мучнистой росой (персик, абрикос), курчавостью (персик, абрикос); листья сливы, терна и миндаля – с характерными пятнами полистигмоза (ожога).

     Плоды семечковых, пораженные паршой, черным раком и плодовой гнилью, косточковых – плодовой гнилью (серой и обыкновенной), клястероспориозом и кармашки слив фиксируются.

     Ранней весной гербаризируются перезимовавшие листья сливы и терна с полистигмозом (красной пятнистостью), яблони и груши с паршой, на которых к этому времени сформировывается сумчатая стадия патогенов.

     С ветвей или штамбов деревьев, пораженных черным раком, срезают кору с пикнидами и вырезают части пораженных побегов.

     Осенью или зимой вырезают ветви плодовых культур, пораженных раком.

      «Ведьмины метлы» вишни, абрикоса, ольхи, березы срезаются целиком и сохраняются в сухом виде.

     На виноградниках до распускания лозы следует собрать старые перезимовавшие листья, на которых сохраняется ооспоры милдью. Весь вегетационный период гербаризируются листья, пораженные милдью, оидиумом, антракнозом, краснухой и хлорозом. В конце вегетации оидиум необходимо собрать с сумчатой стадией спороношения.

     Летом следует производить сбор и фиксацию пораженных оидиумом, милдью, антракнозом, белой, серой и другими гнилями ягод и побегов и кустов винограда

     Корни или погибшуе лозу с опухолями бактериального рака вырезают осенью или рано весной и оставляют для высушивания в проветриваемых местах.